純水回收率是指反滲透裝置在實際使用時總的回收率,即滲透出水量與進水量的比值(V滲透出水量/V進水量×100%)。純水回收率的影響因素一、回收率受多種因素影響回收率受給水水質、膜元件的數量及排列等多種因素的影響小型反滲透裝置由于膜元件的數量少、給水流程短,因而系統回收率普遍偏低。而工業用大型反滲透裝置由于膜元件的數量多、給水流程長,所以實際系統回收率一般均在65%以上,有時甚至可以達到90%。二、回收率和原水中溶解物質的濃縮倍率反滲透純水設備以及超純水設備納濾系統的回收率和原水中溶解物質的濃縮倍率有直接關系。回收率50%的系統,濃縮倍數是2倍;回收率達到90%時,相當于濃縮10倍。三、膜系統內由于濃差極化現象的存在膜表面的料液含鹽量會變得更高。因此,原水由于被濃縮,膜表面的污染會比想象中發生的更快。因此純水回收率越高越好是片面的,選擇適當的回收率就顯得尤為重要了,過高的回收率,面臨結構的形成和急速污染等風險,過低的回收率,使得設備利用不完全,造成資源的浪費。
精密度:精密度系指在規定的測定條件下,用一個均勻樣品,經多次取樣測定所得各個結果之間的接近程度.精密度一般用偏差或相對標準表示.
用標準偏差或相對標準差表示時,取樣測定次數應有統計學意義,至少用6次結果進行評價
相同條件下,由一個分析人員測定所得到結果的精密度稱為重復性(repeatability).在同一個實驗室,不同時間由不同分析人員用不同設備測定結果的精密度,稱為中間精密度(intermediate precision).
在不同實驗室由不同分析人員測定結果的精密度,稱為重現性(reproducibility).當分析方法將被法定標準采用時,應進行重現性試驗.
回收率是,你做樣品時候加入標準,經過前處理后,和原先標準的比率,這個比率有可能超過100%
精密度的檢查是為了考察的方法間的重現性;以相對標準偏差RSD%的考察,一般不大于2.0%.
這是最經典的方法了——微量凱氏法
一、原理
植物組織中的有機氮化物包括蛋白氮和非蛋白氮.非蛋白氮主要是氨基酸和酰胺,以及少量無機氮化物,是可溶于三氯乙酸溶液的小分子.可加入三氯乙酸,使其最終濃度為5%,將蛋白質沉淀出來,分別測定總氮、蛋白氮或非蛋白氮;通常只測定總氮或蛋白氮.將植物材料與濃硫酸共熱,硫酸分解為二氧化硫、水和原子態氧,并將有機物氧化分解成二氧化碳和水;而其中的氮轉變成氨,并進一步生成硫酸銨.為了加速有機物質的分解,在消化時通常加入多種催化劑,如硫酸銅、硫酸鉀和硒粉等.消化完成后,加入過量NaOH,將NH4+轉變成NH3,通過蒸餾把NH3導入過量的硼酸溶液中,再用標準鹽酸滴定,直到硼酸溶液恢復原來的氫離子濃度.滴定消耗的標準鹽酸摩爾數即為NH3的摩爾數,通過計算,可得出含氮量.
蛋白質是一類復雜的含氮化合物,每種蛋白質都有其恒定的含氮量,(約在14%~18%,平均約含氮16%)所以,可用蛋白氮的量乘以6.25(100/16=6.25),算出蛋白質的含量.若以總氮含量乘以6.25,就是樣品的粗蛋白含量.試樣中若含有硝態氮時,首先要使硝態氮還原為銨態氮,可加入水楊酸和硫代硫酸鈉,使硝態氮與水楊酸在室溫下作用生成硝基水楊酸,再用硫代硫酸鈉粉使硝基水楊酸轉化為銨鹽.由于水楊酸與硫代硫酸鈉會消耗一部分硫酸,所以消化時的硫酸用量要酌情增加.
二、材料、儀器設備及試劑
(一)材料:各種干燥、過篩(60~80目)的植物樣品
(二)儀器設備:1.消化管;2.微量凱氏定氮蒸餾裝置一套(圖17);3.三角燒瓶;4.微量滴定管;5.量筒;6.容量瓶;7.燒杯;8.移液管等.
三、實驗步驟
(一)樣品提取分離:準確稱取烘至恒重的樣品0.1000g~0.5000g(依樣品含氮量而定,含氮1~3mg宜),置10ml離心管中,加入5ml5%三氯乙酸,90℃水浴中浸提15min,不時攪拌,取出后用少量蒸餾水沖洗玻棒,待溶液冷卻后,4000rpm離心15min,上清液棄去.并用5%三氯乙酸洗沉淀2~3次,離心,棄去上清液,最后用蒸餾水將沉淀無損地洗入鋪有濾紙的漏斗上,去掉濾液后,將沉淀和濾紙在50℃下烘干,用于蛋白氮的測定.
(二)樣品的消化:取4支消化管編號.1號管直接放入稱好的材料用于測定總氮,2號管放入上述烘干的濾紙和沉淀,用于蛋白氮的測定,3號管放入同樣濾紙一張、4號管不加任何樣品作為空白對照,注意將樣品放入消化管底部.向各消化管加濃硫酸5ml,混合催化劑0.3g~0.5g,將樣品浸泡數h或放置過夜后,在管口蓋一小漏斗,放在遠紅外消煮爐上加熱消化.開始時溫度可稍低,以防止內容物上升至管口.泡沫多時,可從小漏斗加入2~3滴無水乙醇.到管口出現白色霧狀物時,泡沫已不再產生;此時可逐漸升溫,使內容物達到微沸.直到消化液變為清澈透明為止.消化過程中,若在消化管上部發現有黑色顆粒時,應小心地轉動消化管,用消化液將它沖洗下來,以保證樣品消化完全.消化過程約需2~3h.
(三)定容消化完畢待溶液冷卻后,沿管壁仔細加入10ml左右無氨蒸餾水,以沖洗管壁,再將消化液小心轉入100ml容量瓶中.以無氨水少量多次沖洗消化管,洗滌液并入容量瓶.冷卻后用無氨水定容至刻度,混勻備用.
(四)蒸餾及滴定 以下幾步進行:
1.儀器的洗滌:先經一般洗滌后,還要用水蒸氣洗滌.可按下列方法進行蒸氣洗滌.先在蒸氣發生器中加入2/3體積的蒸餾水(事先加入幾滴濃硫酸,使其酸化,加入甲基紅指示劑,并加入少許沸石或毛細玻璃管以防止爆沸).打開漏斗下的夾子,用電爐或酒精爐加熱至沸騰,使水蒸氣通入儀器的各個部分,以達到清洗的目的.在冷凝管下端放置一個三角瓶接收冷凝水.然后關緊漏斗下的夾子,繼續用蒸氣洗滌5min.沖洗完畢,夾緊蒸氣發生器與收集器之間的連接橡膠管,蒸餾瓶中的廢液由于減壓而倒吸進入收集器,打開收集器下端的活塞排除廢液.如此清洗2~3次,再在冷凝管下端換放一個盛有硼酸-指示劑混合液的三角瓶,使冷凝管下口完全浸沒在液面以下0.5cm處,蒸餾1~2min,觀察三瓶內的溶液是否變色.如不變色,表示蒸餾裝置內部已洗干凈.移去三角瓶,再蒸餾1~2min,用蒸餾水沖洗冷凝管下口,關閉電爐,儀器即可供測定樣品使用.
2.標準硫酸銨測定為了熟悉蒸餾和滴定的操作技術,并檢驗實驗的準確性,找出系統誤差,常用已知濃度的標準硫酸銨測試三次.在三角瓶中加入20ml硼酸-指示劑混合液,將此三角瓶承接在冷凝管下端,并使冷凝管的出口浸入溶液中.注意在加樣前務必打開收集器活塞,以免三角瓶內液體倒吸.準確吸取2ml硫酸銨標準溶液,加到漏斗中.
四、結果計算
樣品中總氮量(%)=0.010×(V3—V0)×100×14/(W×1000×10)×100×氮的回收率
樣品中蛋白氮含量(%)=0.0100×(V1-V2-V0)×100×14/(W×5×1000)×100×氮的回收率
回收率(%)=0.0100×(V-V0)×14/(2.0×0.6×100)×100
在選礦中,得到的某一產品的重量與原礦重量的百分比,稱為該產品的產率;在選礦流程中,也可以通過產品的品位計算精礦產率:精礦產率=(原礦品位α-尾礦品位θ)÷(精礦品位β-尾礦品位θ)選礦回收率有實際回收率與理論回收率兩種:實際回收率=[(實際精礦數量(噸)×精礦品位)÷(原礦處理量(噸)×原礦品位)]×100%理論回收率=[β(α-θ)÷α(β-θ) ]×100% 式中符號同前一般理論回收率要高于實際回收率,但不會差別太大。選礦廠兩種回收率都用,根據二者數據進行對比分析,掌握選礦中的不正常情況。回收率包括絕對回收率和相對回收率。絕對回收率考察的是經過樣品處理后能用于分析的藥物的比例。因為不論是生物基質還是制劑輔料中的藥物,經過樣品處理都有一定的損失。相對回收率嚴格來說有兩種。一種是回收試驗法,另一種是加樣回收試驗法。前者是在空白基質中加入藥品,標準曲線也是同此,這種測定用得較多,但有標準曲線重復測定的嫌疑。第二種是在已知濃度樣品中加入藥物,來和標準曲線比,標準曲線也是在基質中加藥物。則精礦產率可由它們的品位計算:=(α-δ)/(β-δ)×100%;α、β和δ分別代表給礦、精礦和尾礦的品位(%)。這種由產品品位計得的產率,又稱為理論產率。擴展資料:根據站內的工藝設備以及管道情況,與儲罐連接的共3條管道,一條為氣相管道,一條為槽車輸送天然氣至儲罐進液的管道,還有一條為儲罐輸出天然氣的出液管道 。按照儲罐的內部結構,槽車輸送天然氣的進液管道是從儲罐的頂部進入,而儲罐輸送液化天然氣的出液管道是從儲罐底部輸出。因此,為可將槽車內的天然氣與儲罐內的液化天然氣直接相通,在進液管與出液管之間增加一處旁通管道及閥門,為此可根據操作情況需要,適時開啟旁通閥門,即可將出液管與進液管相通。旁通管道及閥門增加后,工藝操作步驟也相對進行調整,調整如下 :1、改進前(1)槽車開始卸車時,開啟儲罐進液管道閥門和槽車出液閥門,將槽車內的液化天然氣輸送至儲罐內。(2)卸車末段時,槽車內壓力緩慢降低,達到與槽車內基本一致時(約為0.4 Mpa),卸車完成。2、改進后(1)槽車開始卸車時,開啟儲罐進液管道閥門和槽車出液閥門,將槽車內的液化天然氣輸送至儲罐內。(2)卸車末段時,槽車內壓力緩慢降低,達到與槽車內基本一致時,關閉儲罐進液閥門,同時開啟旁通管道閥門以及儲罐出液閥門,使槽車輸送的天然氣從儲罐底部進入,將槽車剩余的氣態天然氣與儲罐內液化天然氣直接接觸,從而達到氣態轉換液態的目的。(3)直至槽車內壓力降至0.2 Mpa時(按要求槽車內必須保持一點壓力),關閉槽車與儲罐閥門,卸車完成。改進工藝操作后,通過幾個月的數據統計,回收率明顯提高。
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